Plateforme RHEM-AdV
Le plateau d’Histologie du campus Arnaud de Villeneuve fait partie du Réseau d’Histologie Expérimentale de Montpellier (RHEM), une des plateformes de l’unité Biocampus Montpellier d’appui à la recherche. Il a pour mission d’assister les utilisateurs dans le traitement histologique des tissus provenant de modèles animaux ou humains, avec une spécialisation particulière dans l’approche RNAscope™. Ce plateau met à disposition des équipements et offre un soutien technique et scientifique aux équipes de recherche académiques et aux entreprises privées qui en expriment le besoin.
Le plateau met à votre disposition des équipements pour lesquels une formation est proposée. Le parc technique est composé de microtomes, de cryostats (en zones de confinement de niveau 1 et de niveau 2), d’un vibratome et d’un système de congélation Snapfrost.
De plus, le plateau RHEM-AdV offre une expertise en transparisation non toxique (X-Clarity) ainsi qu’en hybridation in situ par la technologie RNAscope.
Si vous souhaitez devenir un utilisateur du plateau pour des mises à disposition ou des demandes de prestations, veuillez prendre contact avec le plateau à l’adresse générique : RHEM-AdV@rhem.cnrs.fr
RHEM-AdV est une plateforme BioCampus.
Expression des gènes Vip (jaune) et Period1 (rouge) révélée par hybridation in situ RNAscope dans les noyaux suprachiasmatiques de l’hypothalamus de souris. Les noyaux cellulaires sont marqués avec le DAPI (bleu).
04 34 35 99 40
IGF Sud 116 04 34 35 92 85
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2016Habilitation à Diriger les Recherches (HDR) - Université de Montpellier - France
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1999Doctorat - École doctorale : Sciences Chimiques et Biologiques pour la santé - Université de Montpellier - France
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1994Diplôme d'Ingénieur Chimiste, Option Chimie Biologique et Biologie Cellulaire - École Nationale Supérieure de Chimie de Montpellier - France
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1994Diplôme d’Études Approfondies (DEA) "Interface Chimie-Biologie : Systèmes moléculaires à visée thérapeutique", Option Pharmaco-Chimie - Université Montpellier I - France
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2009-Chercheur CNRS - Institut de Génomique Fonctionnelle (IGF) - Montpellier - France
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2002-2008Chercheur CNRS, Équipe Dr A. Privat - Institut des Neurosciences (INM) - Montpellier - France
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1999-2002Postdoctorante (Dir. Pr J.M. Henley) - Département d’Anatomie, MRC Centre for Synaptic Plasticity - Université de Bristol - Angleterre
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1999Attachée temporaire de Recherche (Dir. J. Vignon) - INSERM U336, École de Chimie - Montpellier - France
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1994-1999Étudiante en thèse (Dir. J. Vignon) - INSERM U336, École de Chimie - Montpellier - France
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2023-Responsable du GDR "Microglie et Neuroinflammation"
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2021-Responsable Scientifique du plateau d’histologie RHEM-AdV (i.e., Réseau d'Histologie Expérimentale de Montpellier, site Arnaud de Villeneuve
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2019-Membre du comité de pilotage du GDR "Microglie et Neuroinflammation"
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2019-Membre du bureau du Club de Cellules Gliales, Trésorière
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2019-Review Editor pour Frontiers in Aging Neurosciences
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2014-Membre du comité de pilotage de l’animalerie iExplore, site Arnaud de Villeneuve ; suivi des projets & Indexage des lignées murines sur le réseau des animaleries ; Réunions bimensuelles
- Mes recherches portent sur l'étude des mécanismes physiopathologiques à l'origine des maladies neurodégénératives.
- Ces 15 dernières années, j’ai cherché à décrypter la contribution des cellules gliales, en particulier des cellules microgliales, dans l’initiation et la progression de ces pathologies, en particulier la maladie d’Alzheimer. Plus spécifiquement, je cherche à caractériser la réaction microgliale précoce et à identifier son rôle dans la pathogénèse.
- Les objectifs finaux de mes recherches sont d'identifier les voies de signalisation moléculaires microgliales mise en jeu et de déterminer si ces dernières peuvent permettre de définir des biomarqueurs de la maladie ou représenter des cibles pour le développement de nouvelles stratégies. Actuellement, nous centrons nos effort sur le récepteur Clec7a/Dectin-1, un "pattern recognition receptor" identifié comme un régulateur important dans l’inflammation périphérique mais dont le rôle microglial reste largement inconnu.
- Pour atteindre ces objectifs, nous utilisons un large panel d’approches technologiques complémentaires, telles que :
- la purification de cellules gliales
- l’analyse transcriptomique (qPCR, dPC, Nanostring, RNAseq & scRNAseq) sur cellules isolées
- les cultures primaires de microglies et les cultures d’hiPSCs (human induced pluripotent stem-cells)
- les approches cellulaires (phagocytose, libération de cytokines)
- les analyses histologiques (IHC, RNAscope)
- les analyses comportementales (Barnes-Maze, Open-field ; Y-Maze)
04 34 35 99 40
IGF Nord 107a 04 34 35 92 55
IGF Nord 110 04 34 35 92 72
Publications extérieures à l’IGF
- Fluorescent non transgenic schistosoma to decipher host-parasite phenotype compatibility. D. Duval, P.Poteaux, B. Gourbal, A. Rognon, R. De Carvalho Augusto (2023) Front. Immunol. 27:14:1293009. doi: 10.3389/fimmu.2023.1293009.
